Британская ассоциация по ветеринарии мелких животных - Руководство по репродукции и неонатологии собак и кошек

7. Провести исследование спермы, по крайней мере, за неделю до вязки, поскольку повторные вязки у кобелей, страдающих олигозо-оспермией, могут вызывать азооспермию. Имеются сообщения об успешном лечении олигозооспермии у людей антагонистами эстрогенов (кломифеном, тамоксифеном). В редких случаях некоторое улучшение параметров спермы достигается назначением синтетических андрогенов (местеролона, 0,75–1,5 мг/кг).

8. При олигозооспермии следует тщательно устанавливать сроки вязок, ограничивая их количество. При снижении концентрации спермы хорошие результаты дает вагинальное или хирургическое искусственное осеменение. При количестве спермиев в эякуляте более 100 х 10 6вагинальное искусственное осеменение проводят на 4–6 день после пика ЛГ, дату которого устанавливают на основании данных об изменении концентрации прогестерона. В случае неудачи или при низком, но не менее 20 х 10 6количестве спермиев в эякуляте хирургическое искусственное осеменение проводят на 5 день после пика ЛГ.

9. Для других видов животных при двусторонней спермальной гранулеме применяют хирургическое осеменение аспиратом эпидидимиса, содержащим жизнеспособные спермии, однако на собаках метод не отработан.

1. Исключить инфекционные заболевания, в случае необходимости провести лечение.

2. Исключить возможность неполной эякуляции.

3. Исключить контаминацию спермы мочой (проследить за тем, чтобы собака опорожнила мочевой пузырь перед забором спермы).

4. Обеспечить сбор и анализ образца спермы при соответствующем температурном режиме.

5. Не использовать кобеля в разведении в течение 2 месяцев, затем провести повторное исследование.

Для выявления причин бесплодия необходимо получить сведения о пациенте, в том числе и о его репродуктивной активности. Получить такие данные о котах может быть весьма непросто, однако для выбора адекватного лечения ветеринарный врач должен представлять серьезность проблемы (длительность, тяжесть проявлений).

Проводят общий клинический осмотр, включающий осмотр органов репродуктивной системы.

Семенники в норме безболезненны, имеют сферическую форму, одинаковую величину и однородную консистенцию. В случае выявления воспалительных процессов и травм назначают соответствующее лечение. Инфекционный перитонит может вызывать орхит и дегенерацию тестикулов у котов. Крипторхизм чаще наблюдается у чистопородных животных и как у других видов может сопровождаться аспермией. При тяжелых формах орхита и при крипторхизме показана кастрация. Отмечены случаи тестикулярной гипоплазии в результате хромосомных нарушений (38 XY/57, XXY у котов черепахового или белого окраса, а также 38, XXY).

Пенис кота располагается в свободном препуции и направлен назад. Кость полового члена не имеет желоба. На двух третях краниального отдела пениса расположены 100–200 ороговевших остистых отростков, предназначенных для стимуляции влагалища самки во время коитуса и увеличения числа овуляций. Отмечены случаи дифаллоса (двойная головка полового члена) и сохранения уздечки полового члена. У котов часто наблюдается обструкция уретры, которая может быть связана с образованием гематомы. Неудачи при вязке иногда объясняются тем, что вокруг головки полового члена свалялась шерсть. В таком случае шерсть удаляют.

После двухнедельной тренировки около 20 % котов привыкают к искусственной вагине (ИВ).

Для изготовления ИВ используют резиновый «палец» (снятый с 1–2 мл стеклянной пипетки), который надевают на пробирку 3 х 44 мм; все приспособление помещают в полиэтиленовый 60-миллилитровый флакон, наполненный водой с температурой 52 ºС; второй, закругленный конец «пальца» обрезают, натягивают его на край флакона и фиксируют. Для стимуляции самца необходимо присутствие течной самки, дополнительную стимуляцию оказывает надавливание ладонью на область таза. После достижения эрекции ИВ надевают на пенис и через 1–4 минуты собирают эякулят.

При необходимости процедуру проводят под общей анестезией, в качестве анестетиков назначают кетамина гидрохлорид (10 мг/кг) в сочетании с ксилазином (2 мг/кг) или кетамин гидрохлорид (5 мг/кг) в сочетании с медетомидином (80 мг/кг). Для быстрого выхода из анестезии назначают Atipamamezol. Смазанный тефлоновый ректальный зонд 10 х 12 см, снабженный тремя электродами из нержавеющей стати длиной по 5 см, вводят в прямую кишку приблизительно на 6 см. Стимуляция обеспечивается серией импульсов напряжением 2–8 вольт при силе тока 5–220 мА. Серия включает 60 импульсов с интервалом 2 сек.

Методика исследования спермы аналогична применяемой для собак. Нормальные значения параметров приведены в табл. 8.2.

Новая незнакомая обстановка, помещение в клетку или агрессивное поведение кошки могут спровоцировать временное или постоянное снижение либо утрату либидо. Скудный рацион или ожирение также являются причинами подобного нарушения. Устранение причины приводит к восстановлению либидо, однако при врожденном нарушении лечение считают неэтичным в связи с наследственным характером дефекта.

Параметр— Данные

pH — 7,0–7,9;

Объем:

Искусственная вагина — 0,02–0,12 мл;

Электроэякуляция — 0,233 мл;

Количество сперматозоидов:

Искусственная вагина — 13–143 х 10 6;

Электроэякуляция — 28 х 10 6;

Подвижные сперматозоиды — > 80 %;

Сперматозоиды с морфологическими дефектами — < 10 %.

Если при наличии возбуждения кот не может совершить вязку, причина может заключаться в том, что в области пениса свалялась шерсть и появились колтуны (см. выше).

В литературе имеются сведения о ретроградной эякуляции у котов, однако лечение не разработано.

Axner E., Strom В., Linde-Forsberg С., Gustavsson I., Lindblad К. and Wallgren M. (1996) Reproductive disorders in 10 domestic male cats. Journal of Small Animal Practice 37, 394–401.

Burke T. J. (1986) Small Animal Reproduction and Fertility. Lea and Febiger, Philadelphia.

Christiansen I. B. J. (1984) Reproduction in the Dog and Cat. Bailliere Tindall, London Ellington J. E. (1994) Diagnosis, treatment and management of poor fertility in the stud dog. Seminars in Veterinary Medicine and Surgery (Small Animal) 9, 46–53.

England G. C. W. (1996) Reproductive biology in the male dog. The Veterinary Annual 36, 187–201.

Feldman E. C. and Nelson R. W. (1996) Canine and Feline Endocrinology and Reproduction, 2nd edition. W. B. Saunders, Philadelphia.

Johnston G. R., Feeney D. A., River B., and Walter P. A. (1991) Diagnostic imaging of the male canine reproductive organs: methods and limitations. Veterinary Clinics of North America Small Animal Practice 21, 553–589.