Британская ассоциация по ветеринарии мелких животных - Руководство по репродукции и неонатологии собак и кошек

Имеются сообщения об успешном осеменении свежей спермой (как вагинальном, так и внутриматочном). Если осеменение спермой, разбавленной 0,1 мл физраствора, проводят в день введения человеческого ХГ и повторно через 24 часа, т. е. в момент овуляции, обеспечивается более надежное оплодотворение по сравнению с однократным осеменением в день введения человеческого ХГ. Хирургическое внутриматочное осеменение обеспечивает наилучшие результаты, если проводится через 31–50 часов после введения человеческого ХГ. Оплодотворение происходит в течение 49 часов после индукции овуляции. Для выполнения интравагинального осеменения назначение транквилизаторов обычно не требуется.

Длина преддверия влагалища домашней кошки составляет 1–2 см, диаметр 2,5–3,0 см. Французский катетер калибра 3,5 может быть использован для интравагинального осеменения. Его вводят на 45–50 мм во влагалище до шейки матки, выдавливают сперму (фиг. 10.6), после чего в течение 10 минут животное удерживают в положении с приподнятой тазовой частью. Для осеменения свежей спермой в спермодозе должно содержаться не менее 5 х 10 6сперматозоидов.

Индукция овуляции — 100 МЕ чХГ на 3 день эструса;

Овуляция — Через 26–29 часов после инъекции человеческого ХГ;

Оплодотворение — Может происходить в интервале до 49 часов после индукции овуляции;

Анестезия — Может подавлять овуляцию;

Общая длина преддверия влагалища и влагалища — 45–50 мм.

Полноценное потомство можно получить с помощью осеменения замороженной (после ее размораживания) спермой. Вероятность наступления беременности составляет около 10 % при естественной и гормональной стимуляции течки. Низкая эффективность такого метода объясняется, вероятно, повреждениями акросом в процессе замораживания и последующего размораживания, даже если сперматозоиды отличаются хорошей подвижностью. Важным фактором является корректный выбор как времени проведения манипуляции, так и метода осеменения: как и у собак, наилучшие результаты наблюдаются в результате внутриматочного осеменения, особенно если речь идет об использовании замороженной спермы. Хирургическое внутриматочное осеменение не практикуется во многих странах в связи с этическими соображениями. Внутриматочное осеменение через шейку матки значительно повышает результативность данной процедуры.

Искусственное осеменение, в том числе получение и хранение спермы не является распространенным методом племенной работы, однако может стать таковым в самом ближайшем будущем.

Вагинальное осеменение кошки. Сперму вводят в краниальный отдел влагалища ближе к шейке матки

Axner E., Strom В. and Linde-Forsberg С. (1997) Sperm morphology is better in the second ejaculate than in the first in domestic cats electroejaculated twice during the same period of anesthesia. Theriogenology, 47, 929–934.

Axner E., Strom B., Linde-Forsberg C., Gustavsson I., Lindblad К. and Wallgren M. (1996) Reproductive disorders in 10 domestic male cats. Journal of Small Animal Practice 37, 394–401.

Chakraborty P. K., Wildt D. E. and Seager S. W. J. (1979) Serum luteinizing hormone and ovulatory response to luteinizing hormone-releasing hormone in the estrous and anestrous domestic cat. Laboratory Animal Science 29, 338–344.

Dooley M. P. and Pineda M. H. (1986) Effect of method of collection on seminal characteristics of the domestic cat. American Journal of Veterinary Research 47, 286–292.

Dooley M. P., Pineda M. H., Hopper J. G. and Hsu W. H. (1991) Retrograde flow of spermatozoa into the urinary bladder of cats during electroejaculation, collection of semen with an artificial vagina, and mating. American Journal of Veterinary Research 52, 687–691.

Glover T. T. and Watson P. F. (1985) The effect of buffer osmolality on the survival of cat (Felis catus) spermatozoa at 5 °C. Theriogenology, 24, 449–456.

Glover T. T. and Watson P. F. (1987) The effects of egg yolk, the low density lipoprotein fraction of egg yolk, and three monosaccharides on the survival of cat (Felis catus) spermatozoa stored at 5 °C. Animal Reproduction Science 13, 229–237.

Linde-Forsberg С. (1990) Achieving pregnancy by using frozen canine chilled extended semen. Veterinary Clinics of North America-Small Animal Practice 21, 467–485.

Platz C. C. and Seager S. W. J. (1978) Semen collection by electroejaculation in the domestic cat. Journal of the American Veterinary Association 173, 1353–1355.

Platz C. C., Wildt D. E. and Seager S. W. J. (1978) Pregnancy in the domestic cat after artificial insemination with previously frozen spermatozoa. Journal of Reproduction and Fertility 52, 279–282.

Pope C. E., Turner J. L., Quatman S. P. and Dresser B. L. (1991) Semen storage in the domestic felid: a comparison of cryopreservation methods and storage temperatures. Biology of Reproduction 44, 257, 50.

Sojka N. J., Jennings L. L. and Hamner C. E. (1970) Artificial insemination in the cat (Felis catus L.). Laboratory Animal Care 20, 198–204.

Watson P. F. and Glover T. E. (1993) Vaginal anatomy of the domestic cat (Felis catus) in relation to copulation and artificial insemination. Journal of Reproduction and Fertility Supplement 47, 355–359.

Wood T. C., Swanson W. F., Davis R. M., Anderson J. E. and Wildt D. E. (1993) Functionality of sperm from normo-versus teratospermic domestic cats cryopreserved in pellets or straw containers. Theriogenology 39, 342.

У большинства домашних животных беременность прерывает нормальную циклическую активность, увеличивает продолжительность лютеиновой фазы и отдаляет наступление течки. У суки одна из особенностей физиологии заключается в том, что продолжительность лютеиновой фазы одинакова как у беременных, так и у небеременных животных. Именно это фундаментальное отличие репродуктивной физиологии является причиной распространенности у сук ложной беременности; по этой же причине эндокринологические методы диагностики и прерывания беременности у сук отличаются от тех, которые применяются для большинства млекопитающих.

После овуляции и образования желтых тел концентрация прогестерона как при беременности, так и в ее отсутствие сохраняется на приблизительно одинаковом уровне. В среднем у беременных сук уровень прогестерона немного выше и плато его шире, но чуть короче продолжительность лютеиновой фазы, чем у небеременных (фиг. 11.1). Концентрация эстрадиола одинакова у беременных и у небеременных сук и имеет тенденцию увеличиваться в период лютеиновой фазы. Установлено, что во время беременности имеет место специфическое повышение концентрации эстрона и эстронсульфата. По крайней мере, в одной работе отмечается, что общая концентрация эстрогенов в моче в этот период возрастает. Однако указанный факт требует дальнейшего исследования, в настоящее время определение эстрогенов для диагностики беременности не применяют.

При беременности лютеиновая фаза длится около 63 дней (от овуляции до родов), тогда как в отсутствие беременности ее продолжительность составляет около 66 дней. Снижение уровня прогестерона, характерное для второй половины беременности, сопровождается одновременным повышением уровня пролактина. Пролактин вырабатывается гипофизом и обладает лютеотрофическим действием; поддерживая функцию желтых тел, он способствует сохранению повышенной концентрации прогестерона. Угнетение секреции пролактина вызывает резкое прерывание лютеиновой фазы. У беременных сук концентрация пролактина повышается приблизительно в 4 раза, однако у некоторых животных наблюдается повышенная концентрация пролактина и в отсутствие беременности, что следует считать индивидуальной особенностью. Лютеинизирующий гормон (ЛГ) является еще одним лютеотрофическим агентом, подавление его секреции может вызывать рассасывание желтых тел. С наступлением беременности динамика секреции ЛГ не изменяется. Интересно отметить, что в течение первых 15 дней после овуляции желтые тела существует автономно, ограничиваясь минимальной лютеотрофической поддержкой.